ГХ МС Agilent и другие

Уважаемые коллеги!
Около года назад в нашу лабораторию приобрели новый Agilent (7890А/5975С с автосамплером на 16 образцов). Работаем, когда образцов сравнительно немного - ручной метод ввода, когда "завал" - оставляем на ночь на автосамплере, на следующий день расшифровываем хроматограммы.
Я обратила внимание на то, что при автоматическом вводе образцов пики получаются значительно ниже, чем при вводе вручную, при одних и тех же настройках условий ввода. Пробовала экспериментировать со скоростью ввода образца, с числом "прокачек" образца, с разными шприцами. Все-равно отклик на хроматограмме выходит значительно ниже, соответственно иногда соединения "теряются" вовсе.
Возможно, существует какая-то особенность, которую мы упускаем?

Пожалуй, правильнее будет сообщить еще и настройки нашего автосамплера:
Шприц на 10 мкл, ввод образца 2 мкл (это уже от отчаянья),
Sovent A: гексан, число промывок до ввода - 1 раз, после ввода - 4 раза,
Sovent В: этилацетат, число промывок до ввода - 1 раз, после ввода - 1 раз,
"Прокачки" образцом до ввода - 2 раза.
Скорость плунжера при промывках растворителем:
Draw 300 мкл/мин, Dispense 6000 мкл/мин (так было "по умолчанию", побоялась менять)
образцом: Draw 100 мкл/мин, Dispense 100 мкл/мин (пробовали ставить разные).
Ввод образца - со скоростью 100 мкл/мин. Viscosity Delay - 0 сек, глубина опускания иглы - 0 мм (тоже экспериментировали по разному). Вставки в виалу пробовали стеклянные с узким кончиком на 100 мкл и пластиковые с плоским дном на 400 мкл, пробовали ставить виалки открытыми, чтобы не мешало "отрицательное" давление. Количество образца в виалах (во вставке) от 50 до 100 мкл.
Режим ввода - сплитлесс. Лайнер сплит/сплитлесс с зуженной серединкой и вставкой из дезактивированной стекловаты.
Septum Purge Flow 3 мл/мин, Gas Saver 20 мл/мин после 2 мин. Давление на входе 14,8.
Ручной ввод пробовали делать тем же шприцом из автосамплера - все нормально.
Быть может, какая-то "элементарная глупость" притаилась в настройках?

Гермиона, а в виале не маловат ли уровень жидкости - если по 50 мкл пробы брать? Шприц в автосемплере первые прокачки сбрасывает в слив, а набирает он полные 10 мкл. Я никогда не наливал в виалу меньше 90-100 мкл (а стандартно - 150 мкл), ибо тогда есть вероятность, что он наберет (и вколет) воздух с остатками исследуемой жидкости.

Перед ручным заколом необходимо вначале нажать кнопку "PrepRun", чтобы прибор вышел из режима "GasSaver" (т.е. когда стоит сброс 20:1) - при заколе автосэмплером это происходит автоматически - скорее всего, в этом и есть причина наблюдаемых различий...
Более определённо можно будет говорить, если сообщите, в каком режиме вы работаете: со сбросом или нет, если да, то с каким; какой поток газа-носителя через колонку установлен...

chemist-sib, прав, может воздух забирает. чтобы со дна брал надо ставить глубину не 0, а -2. но лучше наливать больше.
второй момент заключается в том что у вас мало промывок растворителем. если шток шприца плохо смочен, он может плохо засасывать воздух, куда спешить? ставьте по 7-10 промывок. и минимум 5 раз промывку пробой.
и еще надо чтобы растворители совмещались, то есть чтобы то что Вы потом колите было хорошо растворимо с тем чем последний раз мыли шприц. у нас всегда например на промывке спирт .

ну и конечно играет большую роль как Вы колите вручную. может "пирожком", тогда оно конечно больше пробы попадает чем при автовводе, он же так не умеет.

Скорость ввода слишком мала. Используйте настройки быстрого ввода если шприц не тефлоновый. Задержку на вязкость лучше поставить 2-3 сек. Глубину опускания иглы для стандартной виалы без вставки устанавливайте -2 (минс два) мм, при этом объем пробы в виале не должен быть менее 150 мкл (200-оптимум).
Виалы обязательно закрывайте, иначе последние пробы подъиспарятся и уровень опустится ниже иглы.

Первое - уберите стекловату и этот лайнер - он не предназначен для сплитлеса. Подойдет синглтайперед лайнер, пустой, без стекловаты. Обязательно проверьте, какой используете растворитель, т.к. у всех разный коэффициент увеличения объема. Самые неподходящие - это спирты. Они переполняют лайнер, тем более при вводе 2 мкл. Наилучший с точки зрения минимального объема паров, если память не изменяет, - хлороформ. Оптимальный на все случаи жизни - этилацетат. И объем паров невысок, и фазу смачивает нормально, образуя ровную пленку растворителя на начальном этапе ввода.
Режим ввода следует выбрать пульсед сплитлесс и перекрывать обдув прокладки на время ввода.
В новых самплерах есть прекрасная опция - сэндвичевый ввод. Очень рекомендую! Прекрасно моделирует ручной ввод.
В общем и целом автоматизированный ввод предпочтительнее во всех случаях. Если он правильно настроен. На порядок повышается воспроизводимость и качество хроматограмм. Автоматический ввод следует применять и для одиночных, и для серийных анализов.

Ох... не заметил... Но вопрос остаётся - перед ручным заколом "PrepRun" на панели прибора нажимаете?

Вот вариант настроек для сэндвичного ввода в режиме сплитлесс для 7890 с тефлоновым шприцем. Если поршень не тефлоновый - работать тоже будет, но можно использовать просто стандартный фаст метод вместо вариабле.
Во всех промывочных виалах - этилацетат.
В виалке для сэндвича - этилацетат безводный.

Front Injector
Syringe Size 10 uL
Injection Volume 1 uL
Solvent A Washes (PreInj) 0
Solvent A Washes (PostInj) 5
Solvent A Volume 8 uL
Solvent B Washes (PreInj) 2
Solvent B Washes (PostInj) 2
Solvent B Volume 8 uL
Sample Washes 0
Sample Wash Volume 2 uL
Sample Pumps 0
Dwell Time (PreInj) 0 min
Dwell Time (PostInj) 0 min
Solvent Wash Draw Speed 300 uL/min
Solvent Wash Dispense Speed 1000 uL/min
Sample Wash Draw Speed 300 uL/min
Sample Wash Dispense Speed 1000 uL/min
Injection Dispense Speed 6000 uL/min
Viscosity Delay 3 sec
Sample Depth -2 mm
Injection Type 2-layer Sandwich
L1 Airgap 1 uL
L2 Volume 0.2 uL
L2 Airgap 0.4 uL



Front SS Inlet He
Mode Pulsed Splitless
Heater On 250 °C
Pressure On 13.317 psi
Total Flow On 54.456 mL/min
Septum Purge Flow On 3 mL/min
Septum Purge Flow Mode Switched
Gas Saver On 15 mL/min After 4 min
Injection Pulse Pressure 36.259 psi Until 0.5 min
Purge Flow to Split Vent 50 mL/min at 1 min

Вот хорошая шпаргалка http://www.chem.agilent.com/Library/poster...5988-6191RU.pdf

Доброго времени суток, коллеги!
Искренне благодарю за дельные советы.
Сегодня дежурю допоздна, хочу попробовать настроить уже автосамплер "нормально", следуя Вашим рекомендациям. Что получится - отпишусь.
Кстати, способ ввода сэндвичем имеется, посмотрела.

Если честно, в последнее время и правда перестала PrepRun нажимать при ручном вводе. Это из-за вечной спешки... Растворяем сухой остаток в спирте, надо уже тоже привыкать к этилацетату, как в методиках написано. Вобщем, есть над чем поработать.

Обратите внимание, что для сэндвича нужна еще одна виалка с растворителем во второй позиции. Посмотрите мануал.

Спасибо, как раз хотела уже спрашивать, куда ставить виалку. То есть, задавать номер виалы с этилацетатом для сэндвича не надо?

На турели самплера есть доп. маркировка: L1, L2, L3 это номера Layer для сэндвича. Сейчас поищу мануал и поправлюсь, если соврал.

Нельзя пренебрегать вводом. Как введете - то и получите. Ввод пробы в капиллярную колонку - отдельная наука. Мелочей-нет. И еще надо ясно представлять себе все процессы, происходящие в испарителе и в колонке на начальном этапе: холодное улавливание, эффект растворителя и пр. Читайте! http://www.anchem.ru/chromos/vegh.pdf

На 16-гнездной турели есть гнезда L2,L3 - 15 и 16 место. Если используете сэндвич L2 - то в 15 гнездо ставите виалку с растворителем, если L3 - то в 15 и 16 гнезда ставите виалки с растворителем.

Да, действительно, там, где позиции 15 и 16 надписано сверху - L2 и L3. Перед сливной виалой.


Благодарю, замечательное руководство. Будем исправляться.

С нетерпением ждем результатов с хроматограммами. В качестве тестового вещества подойдут фенобарбитал, дифениламин и папаверин.

Нажмите для просмотра прикрепленного файла
Уважаемый alexlp!
Выставила все настройки по Вашему образцу, виалки использовала без вставок, пробы - по 200 мкл.
Пока не стала менять температуру испарителя, она у нас 280, и оставила режим ввода сплитлесс. Лайнер тоже пока стоит прежний, просто прибор пару дней еще будет "сильно занят".
И появились, наконец, на наших хроматограммах пики (УРА!). Все остальное буду пробовать и тестировать позже. Хроматограмму щелочного экстракта мочи прилагаю.
Огромное спасибо Вам за помощь!

Это ключевые моменты, уважаемая Гермиона!
Не пренебрегайте! Сменить лайнер на 7890 == 6 сек. Вы половину пробы теряете на вате и за счет неоптимальной геометрии.
Оставляя высокую температуру вы оставляете условия для образования артефактов типа -H2O и т.п. да еще имея дополнительные активные центры в вате!, а работая в сплитлесе вы теряете еще полпробы и получаете размытую начальную зону относительно пулседсплитлес режима.
Удачи!

ОК, иду на склад искать запасы лайнеров и выставляю температуру 250! Все-таки здорово, что хоть кто-то так подробно все объяснил! Дежурство в выходной день, пожалуй, это очень полезно. Еще раз огромное Вам спасибо.

ставить лайнер без ваты не советую во первых без делителя (да еще и с импульсом давления) вся какашка идет прямиком в колонку, а так оседает на стекловате, а вот осевшая грязь после осмоления уже и дает эти эффекты о которых пишет alexlp. Просто без стекловолокна все то же самое будет происходить на колонке. что вам легче сделать: регулярно обновлять лайнер или подрезать колонку?

во вторых воспроизводимость перевода в газовую фазу на лайнере с ватой значительно выше. к примеру был у меня случай когда пользователи без ваты не смогли пройти поверку - не было воспроизводимости, пришлось пожертвовать свой лайнер с ваткой, все пошло ОК. просто менять их надо чаще. Но это все равно лучше чем менять колонку!

то же с температурой. что выдерживает 250, выдержит и 280, артефакты образуются целиком по вине активных центров. это я проверял.

Уважаемый Корвет!
Ваш подход вполне справедлив, когда вы имеете дело с вещдоками. Т.е. когда у вас 10 кг матрицы и 1 кг аналита. Переходим к нашим масштабам. В аликвоте мочи(2мл) имеем примерно 100 нг аналита. концентрируем это в 200 мкл растворителя теряя, в лучшем случае, 20%. получаем 80/200=400 пг во вводимом в колонку объеме.
Теперь перейдем к геометрии. Что произойдет с 1 мкл этанола, который испарится в верхней части лайнера с центральной перетяжкой заткнутого стекловатой в условиях скорости потока 1-2 мл/мин? Понятно, что верхний объем лайнера будет переполнен большая часть пробы будет выброшена назад.
Идеальных решений не бывает. Действительно, в режиме сплитлеса колонки долго не живут, особенно при использовании для пробоподготовки жидкость-жидкостной экстракции. Начальный метр колонки приходится сечь через 500-1000 вводов. Выход - предколонка, желательно из пустого деактивированного капилляра, лучше - чуть большего диаметра для большей поверхности, что даст более короткую зону конденсации растворителя. Можно, альтернативно, использовать куски старых колонок длиной 1-3 метра. Соединяются колонка с предколонкой через стеклянные деактивированные юнионы. Срок службы колонки при условии твердо-фазной экстракции и применения предколонок составляет 3000-4000 вводов. Состояние колонки контролируется по труднохроматографируемым веществам, например дифениламин, фенобарбитал, папаверин, индометацин. Хвостатость вплодь до полного исчезновения свидетельствует о необходимости смены колонки или предколонки. Не маловажную роль играет и дериватизация для срока службы колонки. Ведь дериватизируется не только то, что нас интересует, но и матрица, и в первую очередь ВЖК, которые в виде дериватов не столь сильно задерживаются в колонке. Эта проблема уже обсуждалась лет 5 назад. И еще. Производитель, т.е. Аджилент, не рекомендует применять стекловату для наших аналитов, равно как и специально выпускает лайнеры для сплитлесс ввода. На стр. 155 "The essential Chromatography Catalog from Agilent" You can read following: "Glass wool is generaly NOT recomended for the following analytes: ... pesticides, amines, DRUG of abuse..."

на счет объема этанола при испарении, есть программка flowcalc, она должна быть у Вас, там все рассчитывается для разных типов лайнеров, температур и растворителей. не считал для "деленных пополам лайнеров", у меня их нет, для моих все нормально. но "биопробы" в этаноле все равно не вводить (там же дериваты как правило), я мыть иглу рекомендовал в нем.

я не знаю что там рекомендует Агилент, я знаю то что вижу сам. я слежу за состояние 5-ти гх-мс, три из них работают с биосредами, результаты с ватой не хуже, колонка живет дольше. просто при смене лайнера смотришь на эту вату, и мысленно переносишь это на колонку, и думаешь, "ну и хорошо что оно на вате осталось"...можно конечно предколонку но это очень хлопотно, да и площадь поверхности этой "деактивированной" до поры до времени поверхности примерно такая же выйдет как и у ватки...ну а поверхность старой б\у колонки...мне кажется на ней тоже будет много потерь, на то она и старая...

я кстати еще одну крамольную мысль выскажу, последнее время для биосред перешли на ввод с делением потока, 1\10, так результаты стали даже лучше...в том плане что чувсвительность не хуже, шума меньше, колонка живет дольше. Дело в том что делитель потока в ГХ действует селективно, то есть выдуваются главным образом легкие вещества, то что нас интересует, оно концентрируется, и на него делитель почти не действует...ну мне так кажется...

А без ваты пробовали? А на уровне 15-20 нг/мл с ватой? Или оценка только на основании потоковых проб: что увидели?
Ну мысль не такая уж и крамольная. В былые годы, когда ни аджилентов, ни кристаллов не было, о сплитлесе читали только в книжках и расходы устанавливали пенниками приходилось работать как раз при таких делениях потока. Только давление на входе поднимали. На эффективности это не особо сказывалось, попадали на пологую ветвь кривой Ван-Деемтера, а вот качество ввода было хорошее. Но вот барбитураты при таком делении гонять - все замечательно, а вот ТГК-кислоту уже проблематично, другой порядок концентраций.
Нынешнее поколение супер-упер деактивированных лайнеров действительно позиционируется как сверхиннертное и подходящее для лекарств и наркотиков, но они нам доступны?
А вообще - у каждого свой вкус. Кто-то любит арбуз - а кто то и свинной хрящик

так чтобы с одной пробой да в нескольких повторностях с ватой и без, так не пробовал, просто из практики сложилось такое впечатление. ну да и просто логично же предположить что если грязь не оседает в лайнере, то где она тогда оседает?а вот нужна ли она там?

пожалуй надо все же попробовать такой эксперимент....

Здравствуйте, извините если не по теме, но никому не приходилось сталкиваться с такой проблемой:
ALS Failure Code 245 Autoinjector front tower plunger error. Как от нее избавиться?

Опишите, в какой ситуации возникает ошибка?

стр.163 мануала по автосамплеру:

Front (or Back) plunger error
• The syringe plunger is sticking or
not securely connected to the
plunger carrier.
• The plunger solenoid is binding.
• The plunger carrier encoder is
inoperable.

1 Remove the syringe and check it for
plunger stickiness or binding.
Replace the syringe if necessary.
For more information, see
“Inspecting a syringe” on page 102.
2 Check the viscosity of the sample
against the viscosity parameter.
Reset the viscosity parameter if
necessary.
3 Restart the sequence.
4 If the error occurs again, obtain
Agilent service.

Ошибка возникает при запуске последовательности на этапе промывки растворителем (Solvent A). При этом игла шприца остается во флаконе. Чисто случайно наше 1 выход из ситуации: включаю и выключаю сетевой концентратор, тогда все работает нормально... до запуска другой последовательности.

Какой растворитель А? Пробовали без А? Шприц меняли?

Растворитель А - ацетон В- этилацетат. Оба безводные. Шприц новый, поставил за неделю до появления проблемы.

Уважаемые коллеги!
Поход на склад за нужным лайнером стал поводом для ревизии расходников и запчастей.
Лайнеров нашлось 5 разновидностей:
"простой" без стекловаты,
"простой" с дезактивированной ватой,
суженный посередине без ваты,
суженный посередине с ватой,
без стекловаты, но с "чашечкой" внизу (с запиской, что это лайнер для FFAP).
Какой ставить - это мы уже определились.

Но еще нашлись Gold Plated Seal - с бороздками в виде прямой, и в виде "крестика".
Какой правильнее? Или разницы никакой?

И септы, кроме оранжевых, которые мы используем постоянно, ещё нашлись зеленые и серые. По описанию - вроде все хорошие. Но чем-то же они отличаются?

Gold Plated Seal очень важная деталька. Она загрязняется быстро и сильно. Ее надо периодически менять или чистить (так же как и источник - порошком окида аллюминия, ИПС и ватной палочкой). Для ввода без деления потока (splitlees) подойдут обе шайбы, а вот для ввода с делением потока, особенно когда деление существенное - только крестообразная.
Септы предпочтительнее использовать с дырочкой. Расчетный ресурс - около 250 вколов. Зеленые мне не встречались, врать не буду, а серые - не плохие, использовали часто и долго.

Благодарю Вас за разьяснение, уважаемый Alexlp!

Здравствуйте!
Коллеги, менял ли кто-нибудь батарейку в материнской плате Agilent 6890?
У нее типоразмер обычный "компьютерный"?

P.S. После выключения сбрасывает все настройки конфигурации...

Обычная компьютерная батарейка, но лучше вынуть и посмотреть модель, так как комп у Вас похоже старой модификации, у меня такое тоже было, когда приборы долго стояли без дела ((я сняла пришла в магазин и мне подобрали в отделе), поставка 2001-2004 года, но до сих пор в работе

Я имею в виду не комп, в самом хроматографе на плате батарейка. Вы об этом?

Э... Нет... А при чем здесь тогда конфигурация... управление... У Вас при запуске "железа" сброс идёт.... Если само "железо" тогда я здесь не помощник

Да, именно так и происходит при включении "железа" приходится заново прописывать конфиг подключения, метода, короче тупо все!
В мануале "нагуглил" одну из причин всех бед - батарейка, только не пишут какая именно нужна.
Через неделю только доберусь к железяке, буду разбираться.
Страницу из мануала прилагаю, вдруг кому пригодится... Нажмите для просмотра прикрепленного файла

Насчет Аджилента - не знаю, но думаю, что да, такая же, CR2032 называется, по-моему) У Шимадзу именно так)))

Мануал (см. стр. 430)

Нажмите для просмотра прикрепленного файла

Скорее всего, именно такая.

Как и ожидалось, у Аджилента все совсем не так, как хотелось бы...

BR3032



Для сравнения

А они знают толк в извращениях. Интересно, а после её замены прошивка не слетит?

Аналог BR3032 : "Panasonic Coin Cell Battery CR3032 also known as: EB-CR3032, BR3032, DL3032, E-CR3032, ECR3032, KCR3032, KECR3032, KL3032, L3032"

Здравствуйте. Вопрос может не совсем по теме форума, но самому не получается разрешить проблему и судя по ветке, экспертов хромотографии здесь предостаточно. Анализирую на Agilent 7890B в паре с QTOF 7200 образцы плазмы, ввод 1 мкл холодным сплитом 100 к 1 на PTV (изначально 70 градусов, с последующим поднятием температуры до 300). При построении кривой калибровки с помощью 6 стандартов различной концетрации сталкиваюсь с проблемой, что чем выше концетрация аналитов, тем сильнее сигнал (больше площадь пиков) у внутрениих стандартов (internal standards, IS) добавленных в одинаковом объеме и концентрации перед экстрацией. Растворитель - смесь аналитов 1:1:1 пиридина(MOX)/гексана/MSTFA. Лайнер со стекловатой, используется так же защитная колонка соединенная стеклянным пресс-фитом. Тоже самое в двух словах если получилось нечитаемо - чем выше изначальная концетрация "родных" веществ в пробнике, тем больше площадь у IS, хотя их я добавляю перед экстракцией в одном и том же объеме. Т.е. по логике и площадь у них должна быть одинакова. То что интенсивность сигнала ухудшается из за ионной интерференции это знакомо, но то чтобы он улучшался в несколько раз... При всем при этом линейность кривой калибровки достаточно хороша (R^2 зачастую больше 0,99). В первом столбце на картинке видна концентрация в 30 мкл, и в последнем столбце площадь IS. Спасибо за советы, если таковые появятся

Кхм... При одинаковых объемах конечной пробы и объеме вводимой пробы - такого быть не должно. А воспроизводимость одних и тех же точек какова?
Чаще всего такие ситуации возникают из-за того, что люди забывают о том, что концентрация внутреннего стандарта должна оставаться постоянной, на самом деле.

Заколите серию одной концентрации и просто ВС, посмотрите, нет ли эффекта памяти. Нужно понимать где косяк, в хроматографии, или пробоподготовке. А что конкретно
анализируете?

Конечный объем 75 мкл (у виалок дно V-образное, игла точно достаёт), инъекция 1 мкл. Воспроизводимость точек с одной и той же концетрацией аналитов в районе допустимых для меня значений, коэф. вариации +/- 10%. Анализирую полярные матаболиты (аминокислоты, жирные кислоты, различные сахариды и т.д.) Процесс экстракции: 30 мкл плазмы + 400 мкл метанола (содержит 4 внутренних стандарта); 30 мин на льду и центрифуга; 350 мкл супернатанта в новую виалку; испаряю весь супернатант под азотом до полной сухости; дериватизация в два шага (25 мкл MOX и 25 мкл MSTFA); перед ГХ добавляю 25 мкл со смесью алканов (для определения ретенционного индекса) и инъекционным стандартом. Я с русской номенклатурой могу сильно путать, т.е. внутренний стандарт в моем случае получается экстракционным. Площадь инъекционного стандарта всегда одинакова (разница менее 5%), а вот внутренних (экстракционных) стандартов различная. Т.е. проблема скорее всего не в самой ГХ, а в экстракции по ходу. Хотя не могу исключить, что и в PTV может происходить что-то странное. Там все таки сплит "не настоящий", а холодный при изначальных 70 градусах.



При одинаковой концентрации все нормально, я пробовал и калибрационные стандарты и плазму, если делаю репликаты с одной концентрацией, то проблем как таковых нет. В плазме коэффициент вариации внутренних стандартов около 20-25%, что меня в принципе тоже устраивает. Так как анализ провожу для сравнения концентрации в двух различных группах (условно "здоровые" и "больные"). И разница в концентрации различных веществ в этих группах меня интересует в полтора и более раз.
Я так же каждый шестой анализ делаю инъекцию чистого гексана и не разу эффектов памяти не было. Спасибо за помощь!

И вот типичный пример на картинке. Разница по площади 100%, R^2 при этом >0.998.

С терминологией все нормально, в этом плане мы друг друга спокойно и правильно понимаем, если будет удобнее на английском - тоже не проблема, поймем ;-)
Я ставлю на первый этап пробоподготовки. Плазма... Связывание с белком? Recovery оценивали на моделях?

Я калибрационные стандарты подготавливаю в метаноле. Изначально растворяю кристаллы чистых веществ в метаноле (1 мг/мл), ультразвук минут 5-10 и потом разбавляю до нужной концентрации соединяя в смесь из 50-60 веществ в метаноле. В стандарте с наибольшей концентрацией суммарная концентрация всех аналитов получается около 3,5 мг/мл, в наименьшем 4,5 мкг/мл. Потом беру 30 мкл каждого калибрацинного стандарта и делаю "экстракцию" по тому же протоколу, что и с плазмой.

Recovery не оценивал, но метод экстракции можно сказать стандартный, без модификаций. Смотрел в трех различных источниках и в двух разных институтах видел сам "вживую", везде один и тот же метод и 80-120% извлечение. Единственная разница, что inlet у них как правило сплит/сплитлесс, а не PTV, ну и анализ не на высокого разрешения инструментах проводится (GCxGC-MS вместо нашего GC-QTOF). Звучит как в "бородатом" анекдоте про выигрыш в лоттерею, но в данном случае разница вроде не такая большая. В четверг надеюсь будет возможность поговорить с инженерами аджилентовскими, может что подскажут.
Спасибо за советы, если получится разрешить вопрос, то отпишусь каким образом

Здравствуйте! Не подскажите можно ли заменить G3169-65015 на G3170-65015(плата от 5973 на плату от 5975)?

Здравствуйте!

Чё-то подозреваю, что нет.
G3169-65015
Sideboard PCA, fast electronics, for gas chromatography/mass spectrometry analyzers, used with series 5973, systems 5973A, 5973N and 5973inert

G3170-65015
Sideboard PCA, for gas chromatography/mass spectrometry analyzers, used with series 5975 and 5977, systems 5975A, 5975B, and 5975C

Очистка архива хроматограмм Agilent от неиспользуемых папок и файлов с использованием bat-файла

Добрый день!

Кто может поделиться прошивкой на Agilent GC 7820A , чтобы работала под MassHunter B.07.02.
На приборе установлена A 01.12.005.
Последние прошивки A.01.18.003-A.01.18.007 не пошли - программа не видит ГХ.